Sartorius Stedim Biotech Combisart User manual

Bedienungsanleitung | Instructions for use |
Mode d’emploi | Instrucciones de uso | Istruzioni per l’uso
Combisart®
Combisart®Vakuumfiltrations-Systeme zur Koloniezahl- und Partikelbestimmung |
Combisart®Vacuum Filtration Systems for Colony Count and Particle Counting |
Systèmes de filtration sous vide Combisart®pour la détermination et le
dénombrement des colonies et des particules | Sistemas de filtración al vacío Combisart®
para la determinación del número de colonias y partículas | Sistemi di filtrazione sotto
vuoto Combisart®per la conta delle colonie e l’analisi delle particelle
85030-510-82

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3
Inhaltsverzeichnis
Sartorius Stedim Biotech Vakuumfiltrations-
Systeme sind speziell für die Rückstands-
analytik, insbesondere für Koloniezahl- und
Partikelbestimmung, im Routineeinsatz
entwickelt.
Die als Filterunterstützung dienenden Fritten
sind so konzipiert, dass eine gleichmäßige
Verteilung der Rückstände (Bakterien,
Partikel) auf der Membranfilteroberfläche
gewährleistet ist. Durch Anbringen eines
speziellen Luftfilters an den 3-Wege-Hähnen,
wird das Vakuum steril entlastet, um eine
Sekundärkontamination an der Filterunter-
seite auszuschließen. Die Edelstahlhähne
ermöglichen außerdem ein leichtes Ein- und
Ausschalten des Unterdruckes. Die spezielle
Verschlussklammer vereinfacht das Auflegen
bzw. Abnehmen des Membranfilters und
gewährleistet eine sichere Klemmung.
Weitere Informationen erhalten Sie
im Internet unter
www.sartorius-stedim.de/mikrobio
in dem Kapitel
Vakuumfiltrationssysteme/Combisart®
Zusammenstellen der Systeme
1 Verwendung der Trichter als
Combisart®Systemkomponente 4
1.1 Edelstahlleisten 1-, 3- und 6-fach 4
1.1.1 Zusammenbau der Systeme 4
1.1.1.1 Biosart®250 Funnels 4
1.1.1.2 Biosart®100 Monitore 4
1.1.1.3 Edelstahltrichter 4
1.1.1.4 Glastrichter 4
1.1.1.5 Polycarbonat-Filterhalter 5
1.2 Einzelsysteme 5
1.2.1 Zusammenbau der Einzelsysteme 5
1.2.1.1 Biosart®250 Funnels 5
1.2.1.2 Biosart®100 Monitore 5
1.2.1.3 Edelstahltrichter 5
1.2.1.4 Glastrichter 5
2 Aufbau des kompletten
Vakuumfiltrations-Systems 6
2.1 Benötigtes Zubehör 6
3 Mikrobiologische Untersuchungen 7
4 Analytische Bestimmungen 8
5 Reinigen und Pflegen der
Edelstahlgeräte 8
6 Wartung der Verschlussklammern
der Edelstahltrichter 8
7 Pflege der 3-Wege-Hähne 9
8 Ersatzteile 9
8.1 Edelstahlleisten 1-, 3- und 6-fach 9
8.2 Einzel-Edelstahlsysteme 9
8.3 Adapter 9
9 Technische Daten 10
9.1 Systemkomponenten aus Edelstahl 10
9.2 Anschlussstücke und Adapter 10
9.3 Biosart®100 Monitore
und Biosart®250 Funnels 10
9.4 Glastrichter und Polycarbonat-
filterhalter 10
10 Abbildungen
10.1 Stellungen der 3-Wege-Hähne 11
10.2 Mehrfachsysteme 48
10.3 Einfachsysteme 48

Combisart®ist ein speziell für die Rück-
standsanalytik entwickeltes modulares
Konzept und somit bestens für die mikro-
biologische Qualitätskontrolle geeignet.
Auf jedes Unterteil, welches mit einer
Vakuumquelle verbunden wird, lässt sich
je nach Applikation der entsprechende
Aufgussraum (Trichter) adaptieren.
Bei hohem Probeaufkommen werden
Mehrfachsysteme mit 3 oder 6 Filter-
stationen zur Filtration eingesetzt.
Einfachsysteme mit nur einer Filterstation
eignen sich bei wenigen Filtrationen.
1.1. Edelstahlleisten 1-, 3- und 6-fach
Eine genaue Darstellung der Systeme
finden Sie auf der letzten Aufklappseite.
1.1.1 Zusammenbau des Systems
– Versehen Sie den beiliegenden Stopfen
der 5 Liter Filtratflasche (16672-1) mit
dem L-förmigen Glasrohr und stecken
Sie den Stopfen in die Öffnung der
Filtratflasche.
– Verbinden Sie nun den Ausgang der
Edelstahlleiste (Schlaucholive) mit dem
Eingang der Filtratflasche (Glasrohr)
mittels des Vakuumschlauchs.
– Bestücken Sie nun alle Öffnungen der
Filterstationen seitlich vom 3-Wege-Hahn
mit je einem sterilen Minisart®SRP 25
(17575 ACK).
1.1.1.1 Biosart®250 Funnels 16407
– Schrauben Sie die Basisunterstützung
16840 in die Filterstation der Leiste
soweit ein, bis die Dichtigkeit gewähr-
leistet ist, und die beiden Stifte entweder
rechts|links oder vorne|hinten positio-
niert sind.
– Ziehen Sie danach die Überwurfmutter
mit einem DN 24 Maulschlüssel fest.
– Legen Sie die Silicon-Flachdichtung in
die Basisunterstützung ein und legen
Sie die Edelstahlfritte auf die Silicon-
Flachdichtung.
– Entnehmen Sie ein Membranfilter aus der
Verpackung und legen Sie es zentriert auf
die Edelstahlfritte. Weitere Hinweise zur
Durchführung der Bestimmung finden Sie
unter 3. Mikrobiologie bzw. 4. Analytik.
– Setzen Sie den Biosart®250 Funnel
passgenau auf das Unterteil und
klemmen Sie das Membranfilter durch
einfache Drehung des Trichters im
Uhrzeigersinn fest.
1.1.1.2 Biosart®100 Monitore 16401,
16402, 16403
a) Kontaminationsfreie Abdichtung über
den Monitorrand
– Schrauben Sie die Basisunterstützung
16840 in die Filterstation der Leiste ein.
– Ziehen Sie danach die Überwurfmutter
mit einem DN 24 Maulschlüssel fest.
– Legen Sie die Silicon-Flachdichtung in
die Basisunterstützung ein und legen
Sie die Edelstahlfritte auf die Silicon-
Flachdichtung.
– Setzen Sie den Biosart®100 Adapter
16414 mit den beiden Kerben so auf
die Basis-unterstützung, dass diese
um die Stifte greifen.
– Ein einfaches und sicheres Aufsetzen
bzw. Abnehmen der Monitore ist nun
gewährleistet. Die 47 mm Monitore
dichten über die innere Nut ab. Die
Adaption ist so konzipiert, dass durch
die waagerechte Position eine gleich-
mäßige Verteilung des Rückstandes
auf der Membranfilteroberfläche
gewährleistet ist.
b) Abdichtung über den Filtratausgang
des Monitors
– Vergewissern Sie sich, dass die blaue
O-Ring-Dichtung richtig in der Nut der
Eingangsseite der Filterstation liegt.
– Schrauben Sie das Adapterstück 16835 in
die Filterstation der Leiste abdichtend ein.
– In den Stopfen des Adapterstücks wird
nun der Ausgang des Monitors gesteckt.
Die Monitore lassen sich nun einfach
aufsetzen bzw. abnehmen.
1.1.1.3 Edelstahltrichter 40, 100
und 500 ml
– Schrauben Sie die Basisunterstützung
16840 in die Filterstation der Leiste
soweit ein, bis die Dichtigkeit gewähr-
leistet ist, und die beiden Stifte entweder
rechts|links oder vorne|hinten positio-
niert sind.
– Ziehen Sie danach die Überwurfmutter
mit einem DN 24 Maulschlüssel fest.
– Legen Sie die Silicon-Flachdichtung in
die Basisunterstützung ein und legen
Sie die Edelstahlfritte auf die Silicon-
Flachdichtung.
– Entnehmen Sie ein Membranfilter aus
der Verpackung und legen Sie es zentriert
auf die Edelstahlfritte. Weitere Hinweise
zur Durchführung der Bestimmung
finden Sie unter 3. Mikrobiologie bzw.
4. Analytik.
– Setzen Sie den Edelstahltrichter pass-
genau auf das Unterteil und verschließen
Sie beide Teile mittels der Klammer
(bitte nur leicht per Hand anziehen,
ein Andrücken bis zum Anschlag ist
keinesfalls erforderlich).
– Sollten Sie einen Deckel verwenden,
um Luftkontaminationen zu vermeiden,
legen Sie zuerst die Silicondichtung in
den Deckel ein und verschließen Sie den
Edelstahltrichter mit dem Deckel (gilt
nicht für 40 ml Trichter).
1.1.1.4 Glastrichter 16306|16307
– Vergewissern Sie sich, dass die blaue
O-Ring-Dichtung richtig in der Nut der
Eingangsseite der Filterstation liegt.
– Schrauben Sie das Adapterstück 16836
(für Glastrichter 16306) bzw. 16837 (für
Glastrichter 16307) in die Filterstation
der Leiste abdichtend ein.
– In den Stopfen des Adapterstücks wird
nun das Unterteil des Glasgerätes gestek-
kt und oben mit der weißen
Fritte versehen.
– Entnehmen Sie ein Membranfilter aus
der Verpackung und legen Sie es zentriert
auf die Fritte. Weitere Hinweise zur
Durchführung der Bestimmung finden Sie
unter 3. Mikrobiologie bzw. 4. Analytik.
– Ober- und Unterteil des Glasgerätes
lassen sich nun mühelos und sicher mit
der Metallklammer verbinden.
4
1. Verwendung der Trichter als Combisart®Systemkomponente

1.2.1.3 Edelstahltrichter 40, 100
und 500 ml
– Versehen Sie den Siliconstopfen 17173
(17004) mit der Einzel-Edelstahlbasis
16841. Stecken Sie den Stopfen in die
Öffnung der Filtratflasche, durch Drehen
der Einzel-Edelstahlbasis positionieren
Sie die beiden Stifte so, dass diese nach
rechts|links bzw. vorne|hinten gerichtet
sind.
– Legen Sie die Silicon-Flachdichtung in
die Einzel-Edelstahlbasis ein und legen
Sie die Edelstahlfritte auf die Silicon-
Flachdichtung.
– Bestücken Sie nun die Öffnung der
Filterstation seitlich vom 3-Wege-Hahn
mit je einem sterilen Minisart®SRP 25
(17575 ACK).
– Entnehmen Sie ein Membranfilter aus der
Verpackung und legen Sie es zentriert auf
die Edelstahlfritte. Weitere Hinweise zur
Durchführung der Bestimmung finden Sie
unter 3. Mikrobiologie bzw. 4. Analytik.
– Setzen Sie den Edelstahltrichter pass-
genau auf das Unterteil und verschließen
Sie beide Teile mittels der Klammer
(bitte nur leicht per Hand anziehen,
ein Andrücken bis zum Anschlag ist
keinesfalls erforderlich).
– Sollten Sie einen Deckel verwenden, um
Luftkontaminationen zu vermeiden, legen
Sie zuerst die Silicondichtung in den
Deckel ein und verschließen Sie den
Edelstahltrichter mit dem Deckel
(gilt nicht für 40 ml Trichter).
1.2.1.4 Glastrichter 16306|16307
– Versehen Sie den Siliconstopfen 17174
(17005) bzw. 17175 (17006) mit dem
Unterteil des Glasgerätes. Stecken Sie den
Stopfen in die Öffnung der Filtratflasche.
– Legen Sie die weiße Fritte in das
Unterteil.
– Entnehmen Sie ein Membranfilter aus
der Verpackung und legen Sie es zentriert
auf die Fritte. Weitere Hinweise zur
Durchführung der Bestimmung finden
Sie unter 3. Mikrobiologie bzw.
4. Analytik.
– Ober- und Unterteil des Glasgerätes
lassen sich nun mühelos und sicher
mit der Metallklammer verbinden.
1.1.1.5 Polycarbonat-Filterhalter 16511
– Vergewissern Sie sich, dass die O-Ring-
Dichtung richtig in der Nut der Eingangs-
seite der Filterstation liegt.
– Das Polycarbonat-Filtrationsgerät wird
einfach in die Filterstation der Leiste
abdichtend eingeschraubt.
– Weitere Hinweise zur Durchführung
der Bestimmung finden Sie in der
Bedienungsanleitung, die dem
Filtrationsgerät beiliegt.
1.2 Einzelsysteme
Bei Einzelsystemen befindet sich die
Filterstation auf der Filtratflasche.
Eine genaue Darstellung der Systeme
finden Sie auf der letzten Aufklappseite.
1.2.1 Zusammenbau des Systems
Für die Einzelsysteme sind zwei
Filtratflaschen erhältlich:
2 Liter Auffangvolumen, 16672, mit
Kunststoffsicherheitsolive, und 1 Liter
Volumen, 16606, mit Glasolive.
Die Artikel Nr. für die Siliconstopfen
passend für die 2 Liter Filtratflasche
16672 finden Sie im nachfolgenden
Text (in Klammern die Artikel-Nr. für
die Siliconstopfen passend für die
1 Liter Filtratflasche 16606).
1.2.1.1 Biosart®250 Funnels 16407
– Versehen Sie den Siliconstopfen 17173
(17004) mit der Einzel-Edelstahlbasis
16841. Stecken Sie den Stopfen in die
Öffnung der Filtratflasche. Durch Drehen
der Einzel-Edelstahlbasis positionieren
Sie die beiden Stifte so, dass diese
nach rechts|links bzw. vorne|hinten
gerichtet sind.
– Legen Sie die Silicon-Flachdichtung in
die Einzel-Edelstahlbasis ein und legen
Sie die Edelstahlfritte auf die Silicon-
Flachdichtung.
– Bestücken Sie nun die Öffnung der
Filterstation seitlich vom 3-Wege-Hahn
mit je einem sterilen Minisart®SRP 25
(17575 ACK).
– Entnehmen Sie ein Membranfilter aus
der Verpackung und legen Sie es zentriert
auf die Edelstahlfritte. Weitere Hinweise
zur Durchführung der Bestimmung
finden Sie unter 3. Mikrobiologie bzw.
4. Analytik.
– Setzen Sie den Biosart®250 Funnel pass-
genau auf das Unterteil und klemmen
Sie das Membranfilter durch einfache
Drehung des Trichters im Uhrzeigersinn
fest.
5
1.2.1.2 Biosart®100 Monitore 16401,
16402, 16403
– Versehen Sie den Siliconstopfen 17173
(17004) mit der Einzel-Edelstahlbasis
16841. Stecken Sie den Stopfen in die
Öffnung der Filtratflasche.
– Legen Sie die Silicon-Flachdichtung in die
Einzel-Edelstahlbasis ein und legen Sie
die Edelstahlfritte auf die Silicon-Flach-
dichtung.
– Bestücken Sie nun die Öffnung der
Filterstation seitlich vom 3-Wege-Hahn
mit je einem sterilen Minisart®SRP 25
(17575 ACK).
– Setzen Sie den Biosart®100 Adapter
16414 mit den beiden Kerben so auf die
Einzel-Edelstahlbasis 16841, dass diese
um die Stifte greifen.
– Ein einfaches und sicheres Aufsetzen
bzw. Abnehmen der Monitore ist nun
gewährleistet. Die 47 mm Monitore
dichten über die innere Nut ab. Die
Adaption ist so konzipiert, dass durch
die waagerechte Position eine gleich-
mäßige Verteilung des Rückstandes
auf der Membranfilteroberfläche
gewährleistet ist.

Die Vakuumfiltrations-Systeme von Sartorius
Stedim Biotech sind speziell aufeinander
abgestimmt. Die Zusammensetzung von
Systemkomponenten mit Produkten anderer
Hersteller kann zu Problemen führen. Durch
zahlreiche Tests in unserer Anwendungs-
technik haben wir die optimalen Komponen-
ten und Materialien ausgewählt, mit denen
eine sichere Vakuumfiltration gewährleistet
ist.
Bitte beachten Sie aus Gewährleistungs-
gründen die genaue Vorgehensweise vor,
bei und nach der Vakuumfiltration.
2.1 Benötigtes Zubehör:
Zum Schutz vor Kontaminationen:
Deckel für
Edelstahltrichter 100 ml 6981063
Deckeldichtung 100 ml 6981064
Deckel für
Edelstahltrichter 500 ml 6981001
Deckeldichtung 500 ml 6981003
Vakuumquelle zum Absaugen der Probe:
Vakuumpumpe
für Mehrfachsysteme 16694-2-50-22
Vakuumpumpe
für Einfachsysteme 16694-2-50-06
Vakuumschlauch 16623
Zum Schutz der Vakuumpumpen:
Woulff’sche Flasche 16610
Vacusart®17804M
Für die Handhabung der Membranfilter:
Edelstahlpinzette 16625
Für mikrobiologische Untersuchungen:
Brutschrank (220V) 18113
Koloniezählgerät 17649
Zur Vorbereitung der Nährkartonscheiben:
Dosierspritze 16685-2
Minisart®0,2 μm 17597K
Zur sterilen Entlastung des Vakuums:
Minisart®SRP 25 0,2 μm 17575-ACK
Zur Abtrennung grober Feststoffe:
Vorfiltrationsaufsatz 16807
Cellulosenitrat Vorfilter,
8 μm 11301-050-ACN
– Schrauben Sie vorher die Sicherheitsolive
auf den seitlichen Ausgang der 5- bzw.
2-Liter Filtratflasche (gilt nicht für 1 Liter
Filtratflasche 16606). Stellen Sie mit Hilfe
des Vakuumschlauchs die Verbindung
zwischen Filtratflasche und Wassersperre
(Woulff'sche Flasche oder Vacusart®) her.
– Verbinden Sie nun die Vakuumpumpe
mit der Wassersperre. Beim Einbau des
Vacusart®ist darauf zu achten, dass das
übergetretene Filtrat in die Saugflasche
zurücklaufen kann, und nicht stehen-
bleibt und somit den Luftdurchfluss
blockieren könnte.
– Setzen Sie den Stopfen auf die Filtrat-
flasche und verbinden Sie die System-
komponenten gemäß den Zeichnungen
und Beschreibungen unter 1.1 Mehrfach-
systeme bzw. 1.2 Einfachsysteme.
6
2. Aufbau des kompletten Vakuumfiltrations-Systems

Im folgenden ist die Durchführung von
Koloniezahlbestimmungen mit den wieder-
verwendbaren Systemen aus Edelstahl, Glas
oder Polycarbonat beschrieben. Die Durch-
führung von mikrobiologischen Untersu-
chungen mittels anschlussfertiger Einheiten
wie Biosart®100 Monitore oder 250 Funnels
finden Sie in der beigepackten Bedienungs-
anleitung der jeweiligen Produkte.
3.1 Alle proben- und filtermembran-
berührten Teile des Systems müssen
steril sein. Dafür gibt es je nach Material
verschiedene Möglichkeiten:
a) Autoklavieren (Edelstahl, Glas und
Polycarbonat): Setzen Sie die Geräte so
zusammen, dass eine Filtermembran sicher
zwischen Unterteil und Trichter eingeklemmt
ist. Bedenken Sie dabei, dass das Filter nicht
so fest geklemmt sein darf, dass kein Dampf
an die Klemmung gelangen kann.
Stellen Sie den 3-Wege-Hahn auf „12 Uhr“
(gilt nicht für Glas-Einfachsysteme). Es ist
nicht unbedingt nötig die Edelstahlleisten
16844, 16842 bzw. 16843 immer mitzu-
sterilisieren, sofern Sie die zu adaptierten
Filterhalter (Biosart®100 oder 250,
Edelstahl, Glas,Polycarbonat) unter sterilen
Bedingungen auswechseln.
Decken Sie Ein- und Ausgänge mit Alufolie
ab und autoklavieren Sie gemäß den Techni-
schen Daten der Systemkomponenten.
Nach der Sterilisation setzen Sie das System
fest zusammen und verbinden es mit den
anderen Systemkomponenten.
Stellen Sie den 3-Wege-Hahn auf „9 Uhr“.
b) Abflammen (nur Edelstahl):
Es erspart lange Wartezeiten zwischen den
einzelnen Filtrationen und ist im folgenden
Text ausführlich beschrieben.
3.2 Reinigen Sie ihren Labortisch und
desinfizieren Sie mit Alkohol oder einem
handelsüblichen Desinfektionsmittel.
3.3 Reihen Sie ihre sterilen Nährmedien auf,
z.B. Nährkartonscheiben in Petrischalen oder
alternativ Agar in Petrischalen. Die Nähr-
kartonscheiben sind mit 3.0–3.5 ml sterilem
destillierten oder demineralisiertem Wasser
zu befeuchten. Hierfür empfehlen wir unsere
Dosierspritze (16685-2) mit aufgesetztem
sterilen Minisart®(17597-K).
7
3. Mikrobiologische Untersuchungen
3.4 Neben das autoklavierte Filtrationsgerät
stellen Sie einen Bunsenbrenner sowie ein
Glas mit etwas Alkohol und einer Pinzette
darin.
Sollten Sie mit einem Edelstahlgerät arbeiten
und dieses durch Abflammen entkeimen,
gehen Sie bitte wie folgt vor:
a) Legen Sie sich die steril verpackten
Membranfilter in gut erreichbare Nähe.
b) Schalten Sie die Vakuumquelle ein und
nehmen Sie den Edelstahltrichter ab.
c) Mit dem Bunsenbrenner flammen Sie die
Edelstahlfritte ab. Öffnen Sie dabei den
Hahn („6 Uhr“) und ziehen Sie die Flamme
mittels Vakuum durch die Fritte. Danach
schließen Sie den Hahn wieder („9 Uhr“).
d) Nehmen Sie den Edelstahltrichter in eine
Hand und flammen Sie ihn an der unteren
Dichtfläche ab.
e) Setzen Sie den Edelstahltrichter wieder
auf das Unterteil, wobei die Klammer nur
leicht von der Hand angezogen wird (ein
Andrücken bis zum Anschlag ist keinesfalls
erforderlich). Flammen Sie den Aufsatz innen
von unten nach oben spiralförmig ab.
f) Nun flammen Sie den Deckel innen ab
und setzen Sie ihn wieder auf den Edelstahl-
trichter.
g) Um die Abkühlung des Filtergerätes
zu beschleunigen und das Einlegen des
Membranfilters zu vereinfachen, spülen Sie
das Gerät mit sterilen Wasser (z.B. mit Hilfe
einer Dosierspritze und einem aufgesetzten
sterilen Minisart®). Zum Absaugen des
Wassers den Hahn öffnen („6 Uhr“) und
wieder schließen („9 Uhr“).
h) Sterilisieren Sie die Pinzette kurz in der
Flamme und entnehmen Sie das sterile
Membranfilter (gegebenenfalls mit gelben
Schutzblättchen) der Verpackung. Nehmen
Sie mit einer Hand den Edelstahltrichter mit
Deckel vom Geräteunterteil ab und legen Sie
das Membranfilter (mit dem Gitternetz bzw.
gelben Schutzblättchen nach oben zeigend)
zentrisch auf die Fritte.
i) Sollte das Membranfilter mit einem gelben
Schutzblättchen versehen sein, entfernen Sie
dieses bevor das Gerät mit dem Oberteil oder
Trichter zusammengesetzt wird. Setzen Sie
den Trichter wieder auf das Geräteunterteil
und verschließen Sie beide Teile mittels
der Klammer (immer nur leicht per Hand
anziehen, ein Andrücken bis zum Anschlag
ist keinesfalls erforderlich).
3.5 Gießen Sie die zu untersuchende Probe
in den Trichter ein. Bei Probevolumina unter
5 ml, sind 10 bis 20 ml steriles Wasser oder
physiologische Kochsalzlösung vorzulegen.
Zum Absaugen den Hahn wieder öffnen
(„6 Uhr“) und danach schließen („9 Uhr“).
3.6 Nehmen Sie den Trichter ab und
entnehmen Sie das Membranfilter mit
abgeflammter Pinzette.
3.7 Das Membranfilter wird auf eine Nähr-
kartonscheibe oder auf einen Agarnährboden
aufgelegt und anschließend im Brutschrank
inkubiert. Beim Auflegen des Membranfilters
auf die Nährkartonscheibe ist darauf zu
achten, dass keine Luftblasen eingeschlossen
werden.
3.8 Zur Aufbewahrung der Geräte spülen
Sie diese bitte mit mind. 70% Alkohol und
lassen die Systembestandteile an der Luft
trocknen.
3.9 Die spätere Auswertung der Koloniezahl
wird durch das aufgedruckte Gitternetz
auf der Membran vereinfacht. Es teilt die
Filtrationsfläche optisch in 130 Quadrate
à 3,1+3,1 mm ein. Ein Quadrat entspricht
somit 1/130 der Gesamtfläche (bei Verwen-
dung der als Zubehör erhältlichen Edelstahl-
fritte mit 47 mm Durchmesser, 6980103,
reduziert sich die Filtrationsfläche auf
9,6 cm2. Ein Gitternetzquadrat entspricht
hier 1/100 der 9,6 cm2).
Hinweis: Vorfiltration
Proben, die einen hohen Gehalt an Schmutz
bzw. unlöslichen Feststoffen haben, müssen
für den bakteriologischen Keimnachweis
vorfiltriert werden. Der Vorfiltrationsaufsatz
aus Edelstahl (16807) ermöglicht die Durch-
führung der Vorfiltration zusammen mit
der eigentlichen Membranfiltration in einem
Arbeitsgang. Er wird zwischen Edelstahl-
trichter und Unterteil aufgesetzt, vollständig
mit sterilem Wasser gefüllt (um zu vermei-
den, dass eingeschlossene Luft die Filtration
behindert) und mit einem bakteriologischen
Vorfilter 11301-050 (8 μm Porengröße)
bestückt. Grobe Bestandteile in der zu
prüfenden Probe werden auf diesem Vorfilter
zurückgehalten, so dass das auf der Edel-
stahlfritte liegende Membranfilter entlastet
wird und die Kolonien ungehindert durch
störende Ablagerungen anwachsen können.
Der Vorfiltrationsaufsatz ist ebenfalls
abflammbar.

4.1 Setzen Sie das Filtrationssystem wie
unter Punkt 2 und 3 beschrieben zusammen.
Um eine Sekundärkontamination der Mem-
branunterseite und der Filterunterstützung
mit Partikeln zu vermeiden, empfiehlt es
sich das Minisart®SRP 25 als Schutz bei der
Filtration zu verwenden. Ist das jedoch für
Ihre Anwendung irrelevant, verschließen Sie
den Ausgang des Minisarts®mit einem Luer
Lock male Blindstopfen (17012-E).
4.2 Falls erforderlich, spülen Sie das
Fitrationsgerät, das Membranfilter und
die Pinzette partikelfrei.
4.3 Nehmen sie den entsprechenden Trichter
vom Geräteunterteil ab und legen Sie das
Membranfilter mittels der Pinzette auf die
Fritte.
4.4 Setzen Sie den Trichter wieder auf das
Geräteunterteil und verschließen Sie beide
Teile mit der Klammer (die Edelstahltrichter
immer nur leicht per Hand anziehen, ein
Andrücken bis zum Anschlag ist keinesfalls
erforderlich). Biosart®250 Funnels werden
durch Drehen im Uhrzeigersinn arretiert.
4.5 Füllen Sie die zu untersuchende Probe
in den Trichter.
4.6 Schalten Sie die Vakuumquelle ein.
Öffnen Sie den 3-Wege-Hahn („6 Uhr“).
4.7 Nach Beendigung der Filtration
schließen Sie den Hahn („9 Uhr“) oder
schalten Sie die Vakuumpumpe aus,
nehmen den Trichter ab und entnehmen
das Membranfilter zwecks gravimetrischer,
optischer, chemischer oder einer anderen
Auswertung.
4.8 Eine optische Auswertung des Rück-
stands wird durch das aufgedruckte Gitter-
netz auf der Membran vereinfacht, es teilt
die Filtrationsfläche optisch in 130 Quadrate
à 3,1+3,1 mm ein. Ein Quadrat entspricht
somit 1/130 der Gesamtfläche (bei Verwen-
dung der als Zubehör erhältlichen Edelstahl-
fritte mit 47 mm Durchmesser, 6980103,
reduziert sich die Filtrationsfläche auf
9,6 cm2. Ein Gitternetzquadrat entspricht
hier 1/100 der 9,6 cm2).
Um eine lange Lebensdauer und Funktions-
tüchtigkeit zu gewährleisten, ist es not-
wendig, die Geräte vor dem erstem Gebrauch
und nach jeder Filtrationskampagne zu
reinigen.
Gehen Sie so vor:
5.1 Zerlegen Sie das Gerät in seine
Einzelteile.
5.2 Säubern Sie alle Teile mit warmen Wasser
und schonenden handelsüblichen Labor-
reinigungsmitteln (für Metall, Glas, Kunst-
stoff) und weichen Bürsten.
5.3 Spülen Sie die Teile mit heißen Wasser
und danach mit destilliertem Wasser ab. Eine
zusätzliche Spülung mit 70%igen Alkohol
beschleunigt den Trocknungsvorgang.
5.4 Trocken Sie die Teile im Trockenschrank.
Bitte verwenden Sie zum Trocknen keine
Tücher wegen etwaiger Faserabgabe an das
Gerät.
Die Verschlusskammer kann nach dem
häufigen Gebrauch an Spannkraft verlieren
und dadurch kann es zu Undichtigkeiten
kommen. Spannen Sie die Verschluss-
klammer mit einer Flachzange durch
leichtes Zusammendrücken nach.
Hinweis:
Die Verschlussklammer immer nur leicht
per Hand anziehen, ein Andrücken bis zum
Anschlag ist keinesfalls erforderlich.
8
4. Analytische Bestimmungen 5. Reinigen und Pflegen 6. Wartung der Verschluss-
der Edelstahlgeräte kammer der Edelstahltrichter

Bei Schwergängigkeit sollte der Hahn
ausgebaut, gereinigt, getrocknet und
gefettet werden (z.B. mit Hochvakuumfett
schwer) werden. Zum Ausbauen des
Hahnes gehen Sie bitte so vor:
7.1 Entfernen Sie zunächst auf der Rückseite
des Hahns die Rändelmutter und die Unter-
legscheibe.
7.2 Nun können Sie den Hahn heraus-
nehmen.
Wenn Sie die Hähne von mehreren
Filtrationsgeräten ausgebaut haben, ist
beim Einbauen unbedingt darauf zu achten,
dass der Hahn wieder in den Schliffkegel
eingesetzt wird, aus dem er entnommen
wurde, da er dafür exakt eingeläppt, d.h.
eingeschliffen wurde.
9
7. Pflege der Edelstahl 8. Ersatzteile
3-Wege-Hähne
8.1 Ersatzteile für Edelstahl-Leisten
8.2 Ersatzteile für Einzelsysteme
8.3 Ersatzteile für Adapter 16835|
16836|16837
Siliconstopfen für 16835 00279
Siliconstopfen für 16836 00280
Siliconstopfen für 16837 00281
Ersatzteile für Glasgeräte 16306|16307
Entnehmen Sie die Informationen bitte
der dem Produkt beiliegenden Bedienungs-
anleitung (FL-6001-a).
Ersatzteile für Polycarbonat Filtrations-
gerät 16510
Entnehmen Sie die Informationen bitte
der dem Produkt beiliegenden Bedienungs-
anleitung (FL-6026-n).
6981001
Edelstahl-Deckel
6981003
Silikondichtung für
Deckel 6981001
6981002
Edelstahl-Trichter (500 ml)
mit Klammer
6980264 Klammer
6980102 Edelstahlfritte, 50 mm
6980103 Edelstahlfritte, 47 mm
16840 Edelstahl-Basisunterstützung
(inkl. 47-mm-Fritte und Silikon ichtung)d
16840
Basisunterstützung
16840
Basis-
unterstützung
6980124 Silikon-Flachdichtung
6980104 PTFE-Flachdichtung
6980235 Silikon-O-Ring
(Packung mit 3 Stück)
69802 Silikon-O-Ring74 8 20+
6980271
Silikon-O-Ring
(16 x 2 mm)
6980272 SchlaucholiveEdelstahl-
6980271
Silikon-O-Ring
(16 x 2 mm)
6980270
Edelstahl appek
Edelstahl-Leisten
ohne Basisunterstützung
und Trichter:
16844 Absaugleiste, 1-fach
16842 Absaugleiste, 3-fach
16843 Absaugleiste, 6-fach
6981063
Edelstahl-Deckel
6981064
Silikondichtung
6981065
Edelstahl-Trichter
(100 ml) mit
Klammer
6980264
Klammer
6981004
Edelstahl-
Trichter (40 ml)
mit Klammer
6980267
3-Wege-Hahn,
Edelstahl
6980268
Rändelmutter
6980225
Stopfen, konisch
(10 Stück)
17575-ACK
Minisart SRP
(50 Stück)
17012-E
Luer-Lock-
Stopfen
(12 Stück)

9.1 Edelstahlgeräte
Leisten 16844|16842|16843 Trichter|Deckel|Dichtung 6981004 Basisunterstützung 16840
6981065|063|064, 6981002|001|003 1-fach Basis 16841
Material Edelstahl Werkstoff 1.4301 Edelstahl Werkstoff 1.4301 Edelstahl Werkstoff 1.4301
(B.S. 304S31/AISI 304) (B.S. 304S31/AISI 304) (B.S. 304S31/AISI 304)
Dichtung Silicon 14+2 mm (3 Stk) Silicon 77,2+85,8 (6981064) Silicon 41+50+1
Silicon 122+131 (6981003)
Filterdurchmesser – 47 mm (oder 50 mm) 47 mm (oder 50 mm)
Filtrationsfläche – 12,5 cm212,5 cm2
Maße (L/H/T) 16842: 435/103/120 – –
16843: 910/103/120
Max. Betriebsdruck Vakuum, max. 2 bar Überdruck Nur Vakuum Nur Vakuum
Entkeimung – Abflammen Abflammen
Sterilisation
Autoklavieren max.134 °C, 30 min max. 134 °C, 30 min max. 134 °C, 30 min
Trockenhitze max.180 °C, 30 min max. 180 °C, 30 min max. 180 °C, 30 min
Eingang TR 20+2 Innengewinde – –
Ausgang Schlaucholive DN 10 – 16840: TR 20+2 mm Außengewinde
mit DN 24 Sechskantmutter
16841: 10 mm Auslaufstutzen
9.2 Anschlussstücke und Adapter
Anschlussstücke 16835|16836|16837 Biosart®100 Adapter 16414|16415|16416
Material Edelstahl Werkstoff 1.4301 Silicon (16414, 16415)
(B.S. 304S31/AISI 304) Polypropylen (16415)
Stopfen Silicon –
Max. Betriebsdruck Nur Vakuum Nur Vakuum
Sterilisation
Autoklavieren max. 134°C, 30 min max. 134°C, 30 min
Trockenhitze max. 180°C, 30 min –
Eingang 16835: 10 mm Bohrung –
16836: 11 mm Bohrung
16837: 14 mm Bohrung
Ausgang TR 20+2 mm Außengewinde –
9.3 Biosart®100 Monitore und Biosart®250 Funnel
Biosart®100 Monitore Biosart®250 Funnel
16401|02|03, 47 mm 16407
Materialien:
Gehäuse Polystyrol Polypropylen
Membranfilter Cellulosenitrat mit Gitternetz –
Kartonscheibe Cellulose –
Stopfen|Adapter Polyethylen –
Filterdurchmesser 47 mm 47 mm (oder 50 mm)
Filtrationsfläche 15,5 cm212,5 cm2
Kapazität 100 ml, 10 ml Skalierung 250 ml, 50 ml Skalierung
Max. Betriebsdruck Nur Vakuum Nur Vakuum
Packungseinheit 48 Stück, steril 50 Stück, steril
Ausgang 6,5+1,5 mm –
9.4 Glasgeräte und Polycarbonatfiltrationsgerät
Glasgerät 16306 Glasgerät 16307 Polycarbonatgerät 16511
Materialien:
Aufsatz|Unterteil Borosilicatglas 3.3 Borosilicatglas 3.3 Polycarbonat
Klammer eloxiertes Aluminium eloxiertes Aluminium –
Filterunterstützung PTFE|Borosilicatglas 3.3 PTFE/Borosilicatglas 3.3 Polypropylen
Deckel – Silicon Polycarbonat
Dichtung Silicon 25+3 mm Silicon 45+3 mm Silicon 40+5, 80+3, 14+2
Filterdurchmesser 25 mm (Vorfilter 20 mm) 47 mm (Vorfilter 40 mm) 47 mm (Vorfilter 37 mm)
Filtrationsfläche 3 cm212,5 cm211,5 cm2
Kapazität 30 ml 250 ml 250 ml
Max. Betriebsdruck Nur Vakuum Nur Vakuum Vakuum oder max. 2 bar Überdruck
Sterilisation
Autoklavieren max. 134 °C, 30 min max. 134 °C, 30 min max. 121 °C, 30 min
Trockenhitze max. 180 °C, 30 min max. 180 °C, 30 min –
Ausgang 12 mm Auslaufstutzen 15 mm Auslaufstutzen TR 20+2 mm Außengewinde
10
9. Technische Daten

10.1 Stellungen der 3-Wege-Hähne
Das Combisart®Vakuumfiltrations-System
zeichnet sich durch seine hohe Flexibilität
aus.
Erstmals hat Sartorius Stedim Biotech ein
System bei dem sich alle Trichter-Modelle
auf alle Unterteile adaptieren lassen.
Der Anwender ist jederzeit flexibel was die
Wahl seiner Materialien,
die Anzahl der Geräte und die Dauer der
Durchführung angeht. Besonders
bei Mehrfachsystemen (3-fach bzw. 6-fach-
Leisten) ist die Handhabung vereinfacht:
11
10. Abbildungen
– Jede einzelne Filterstation lässt sich
getrennt von der Leiste autoklavieren,
und spart somit Kapazitäten im Auto-
klaven.
– Der Überstand bei verblockten Membra-
nen lässt sich durch einfaches Abnehmen
der Filterstation verwerfen.
– Alle Trichter lassen sich beliebig positio-
nieren, je nach dem ob Rechts- oder
Linkshänder die Untersuchung durch-
führen.
Die Minisart®SRP, die seitlich an den
3-Wege-Hähnen eingesteckt werden,
garantieren sichere Ergebnisse. Sie
schützen die Filterunterseite vor möglichen
Kontaminationen mit Mikroorganismen
bzw. Partikeln aus der Umgebung.
Hahnstellung
OFFEN
„6 Uhr“
Hahnstellung
BELÜFTUNG
„9 Uhr“
Hahnstellung
ENDE
„3 Uhr“
Hahnstellung
AUTOKLAV
„12 Uhr“
Zur Filtration
Das volle Vakuum zieht die
Probe durch das Membranfilter.
Das Belüftungsfilter ist
abgetrennt.
Nach der Filtration
Das Vakuum zwischen Hahn
und Membranfilter wird steril
und partikelfrei entspannt.
Sekundärkontamination der
Filterunterseite wird sicher
ausgeschlossen.
Nach der Filtrationskampagne
Das Restvakuum zwischen
Pumpe und Hahn wird über das
Sterilfilter entspannt.
Zum Autoklavieren
Zur sicheren Sterilisation strömt
der Dampf ungehindert durch
alle Öffnungen.

1 Use of Funnels as Combisart®
System Components 13
1.1 Stainless Steel Systems 1-, 3-
and 6-branch 13
1.1.1 Assembling Branch Systems 13
1.1.1.1 Biosart®250 Funnels 13
1.1.1.2 Biosart®100 Monitors 13
1.1.1.3 Stainless Steel Funnels 13
1.1.1.4 Glass Funnels 13
1.1.1.5 Polycarbonate Filter Holder 14
1.2 Individual Filter Holder System 14
1.2.1 Assembling Individual Filter
Holder Systems 14
1.2.1.1 Biosart®250 Funnels 14
1.2.1.2 Biosart®100 Monitors 14
1.2.1.3 Stainless Steel Funnels 14
1.2.1.4 Glass Funnels 14
2 Assembling the Complete
Vacuum Filtration System 15
2.1 Required Accessories 15
3 Microbiological Tests 16
4 Analyses 17
5 Cleaning and Care of Stainless
Steel Filter Holders 17
6 Maintenance of Quick-Lock
Clamps on Stainless Steel Funnels 17
7 Maintenance of Stainless Steel
Three-Way Valves 18
8 Spare Parts 18
8.1 Stainless Steel Manifolds,
1-, 3- and 6-Branch 18
8.2 Individual Bases 18
8.3 Adapters 18
9 Specifications 19
9.1 Stainless Steel System Components 19
9.2 Connectors and Adapters 19
9.3 Biosart®100 Monitors and the
Biosart®250 Funnel 19
9.4 Glass and Polycarbonate Filter
Holders 19
10 Figures
10.1 Three-Way Valve Positions 20
10.2 Multiple-Branch Systems 48
10.3 Individual Filter Holder Systems 48
Sartorius Stedim Biotech vacuum filtration
systems have been specifically developed for
routine residue analysis, particularly colony
and particle counting.
The filter supports are designed to ensure
uniform distribution of substances retained
(bacteria, particles) on the surface of the
membrane filter. Releasing the vacuum under
sterile conditions by attaching a special air
filter to the three-way valves, prevents
secondary contamination on the underside
of the filter. In addition, the stainless steel
valves allow easy control of the vacuum
supply. The special quick-lock clamp simplifies
the insertion and removal of the membrane
filters and guarantees secure attachment.
More information is available on the internet
under
www.sartorius-stedim.com/microbio
in the section entitled Stainless Steel Vacuum
Systems|Combisart®Hardware Setups.
12
Table of Contents

Combisart®is a modular-designed system
specifically developed for residue analysis.
Depending on the application, the
corresponding funnel can be adapted
to each base, which is connected to a
vacuum source.
Multiple-branch systems with 3 or 6 filter
units are employed for extensive sam-
pling. Individual filter holder systems with
just one filter unit are suitable when few
filtration runs are carried out.
1.1. Stainless Steel Systems, 1-, 3-
and 6-branch
Please refer to the last fold-out page
for more detailed information on these
systems.
1.1.1 Assembling Multiple-Branch
Systems
– Insert the L-shaped glass tube into the
stopper of the 5-liter filtrate flask
(16672-1), then insert the stopper into
the opening of the filtrate flask.
– Connect the outlet of the stainless steel
manifold (hose connector) to the inlet
of the filtrate flask (glass tube) using the
vacuum hose.
– Attach a Minisart®SRP 25 (17575 ACK)
to the side opening of the three-way
valve for each filter unit.
1.1.1.1 Biosart®250 Funnels, 16407
– Screw the single 16840 base into the
filter unit thread on the manifold, turning
the base until the two pins are positioned
either right|left or front|back.
– Tighten the threaded nut using a 24-mm
open-end wrench (spanner).
– Insert the flat silicone gasket into the
single base, and place the stainless steel
filter support onto the silicone gasket.
– Remove a membrane filter from the
package, and center it on the stainless
steel filter support. For further instruc-
tions on how to perform the analysis,
please refer to Section 3 “Microbiology”
and|or Section 4 “Analyses.”
– Place the Biosart®250 Funnel onto the
base so that it fits precisely, and clamp
down the membrane filter simply by
turning the funnel clockwise.
13
1. Use of Funnels as Combisart®System Components
1.1.1.2 Biosart®100 Monitors 16401,
16402, 16403
a) Contamination-free sealing above the
edge of the Monitors
– Screw the single 16840 base support into
the filter unit thread on the manifold.
– Tighten the threaded nut using a 24-mm
open-end wrench (spanner).
– Insert the flat silicone gasket into the
single base, and place the stainless steel
filter support onto the silicone gasket.
– Place the Biosart®100 adapter (16414)
onto the base support so that the pins on
the support fit into the two notches on
the adapter.
– You can now easily and safely attach
and remove the Monitors individually.
The 47-mm Monitors provide a seal
via the internal groove. This unique
design guarantees uniform distribution
of the residue on the membrane surface
when the Monitor is positioned so that
it is perfectly level.
b) Sealing via the filtrate outlet
of the Monitor
– Make certain that the blue silicone gasket
is seated properly in the groove on the
upstream side of the filter unit.
– Attach the 16835 adapter to the filter
unit thread on the manifold, forming a
tight seal.
– Insert the outlet of each Monitor into
the stopper of the adapter. You can now
easily and safely attach and remove the
Monitors individually.
1.1.1.3 Stainless Steel Funnels,
40, 100 and 500 ml
– Screw the single 16840 base into the
filter unit thread on the manifold until
the two pins are positioned either
right|left or front|back.
– Tighten the threaded nut using a 24-mm
open-end wrench (spanner).
– Insert the flat silicone gasket into the
base, and place the stainless steel filter
support onto the silicone gasket.
– Remove a membrane filter from the
package, and centre it on the stainless
steel filter support. For further instruc-
tions on how to perform the analysis,
please refer to Section 3 “Microbiology”
and|or Section 4 “Analyses.”
– Place the stainless steel funnel onto
the base so that it fits precisely and lock
the funnel in place with the clamp (just
lightly push down on the quick-lock
clamp to secure the parts; there is no
need to force the clamp down to it’s
full extent).
– If you are using a lid to prevent airborne
contamination, place the silicone seal
into the lid first, then close the stainless
steel funnel with the lid (does not apply
to the 40-ml funnel).
1.1.1.4 Glass Funnels, 16306|16307
– Make certain that the blue silicone gasket
is seated properly in the groove on the
upstream side of the filter unit.
– Attach adapter no. 16836 (for the 16306
glass funnel) or no. 16837 (for the 16307
glass funnel) to the filter unit thread on
the manifold, forming a tight seal.
– Insert the base of the glass funnel into
the stopper of the adapter, and attach the
white filter support on top of the base.
– Remove a membrane filter from the
package, and center it on the filter
support. For further instructions on how
to perform the analysis, please refer to
Section 3 “Microbiology” and|or Section
4 “Analyses.”
– You can now easily and securely connect
the upper part and base of the glass
funnel using the metal clamp.

1.1.1.5 Polycarbonate Filter Holder,
16511
– Make certain that the blue silicone gasket
is seated properly in the groove on the
upstream side of the filter unit.
– Screw the polycarbonate filter holder into
the filter unit thread on the manifold,
forming a tight seal.
– For further instructions on how to
perform the analysis, please refer to
the Directions for Use accompanying
the filter holder.
1.2 Individual Filter Holder Systems
For individual systems the filter station is
positioned on the top of a suction flask.
Please refer to the last fold out page
for more detailed information on these
systems.
1.2.1 Assembling the Individual
Filter Holder Systems
There are two different kinds of filtrate
flasks available for the individual filter
holders: a 2-liter flask, (no. 16672), with
a plastic safety connector, and a 1-liter
flask, (no. 16606), with a glass connector.
Refer to the following funnel descriptions
to obtain the order numbers for the
silicone stoppers (in parentheses) which
fit the 16672 2-liter flask (and the 16606
1-liter flask).
1.2.1.1 Biosart®250 Funnels, 16407
– Attach the 16841 stainless steel individ-
ual base to the 17173 (17004) silicone
stopper and insert the stopper into the
opening of the filtrate flask. By turning
the individual base, position the two pins
so that they are either right|left or
front|back.
– Insert the flat silicone gasket into the
individual base, and place the stainless
steel filter support onto the silicone
gasket.
– Attach a Minisart®SRP 25 (17575 ACK)
to the side opening of the three-way
valve.
– Remove a membrane filter from the
package, and center it on the stainless
steel filter support. For further instruc-
tions on how to perform the analysis,
please refer to Section 3 “Microbiology”
and|or Section 4 “Analyses.”
– Place the Biosart®250 funnel onto the
base so that it fits precisely, and clamp
down the membrane filter by simply
turning the funnel clockwise.
1.2.1.2 Biosart®100 Monitors, 16401,
16402, 16403
– Insert the 16841 stainless steel individual
base into the 17173 (17004) silicone
stopper and insert the stopper into the
opening of the filtrate flask.
– Insert the flat silicone gasket into the
individual base, and place the stainless
steel filter support onto the silicone
gasket.
– Attach a Minisart®SRP 25 (17575 ACK)
to the side opening on the three-way
valve.
– Place the Biosart®100 Adapter (16414)
onto the 16841 stainless steel individual
base so that the pins on the support fit
into the two notches on the adapter.
– You can now easily and safely attach
and|or remove the Monitors individually.
The 47-mm Monitors provide a seal via
the internal groove. This unique design is
to guarantee uniform distribution of the
residue on the membrane surface when
the Monitor is positioned absolutely level.
1.2.1.3 Stainless Steel Funnels,
40, 100 and 500 ml
– Insert the 16841 individual stainless steel
base into the 17173 (17004) silicone
stopper and insert the stopper into the
opening of the filtrate flask. By turning
the individual base, position the two pins
so that they are either right|left or
front|back.
– Insert the flat silicone gasket into the
individual base, and place the stainless
steel filter support onto the silicone
gasket.
– Attach a Minisart®SRP 25 (17575 ACK)
to the side opening on the three-way
valve.
– Remove a membrane filter from the
package, and centre it on the stainless
steel filter support. For further instruc-
tions on how to perform the analysis,
please refer to Section 3 “Microbiology”
and|or Section 4 “Analyses.”
– Place the stainless steel funnel onto the
base so that it fits precisely, and lock
the funnel in place using the clamp
(lightly push down on the quick-lock
clamp to secure the parts; there is no
need to force the clamp down to its full
extent).
– If you are using a lid to prevent airborne
contamination, place the silicone seal
into the lid first, then close the stainless
steel funnel with the lid (does not apply
to the 40-ml funnel).
1.2.1.4 Glass Funnels, 16306|16307
– Insert the base of the glass funnel into
the 17174 (17005) or 17175 (17006)
silicone stopper and insert the stopper
into the opening of the filtrate flask.
– Seat the white filter support into
the base.
– Remove a membrane filter from the
package, and center it on the filter
support. For further instructions on how
to perform the analysis, please refer to
Section 3 “Microbiology” and|or Section
4 “Analyses.”
– You can now easily and safely connect
the upper part and base of the glass
funnel using the metal clamp.
14

Sartorius Stedim Biotech vacuum filtration
systems have been specially matched to one
another. Problems may be encountered if
components of products from other manu-
facturers are used with Sartorius Stedim
Biotech systems. Applications technology
specialists have performed numerous tests
to select ideal components and materials
which guarantee reliable vacuum filtration.
The manufacturer’s warranty will apply
only if the specified procedure ist followed
before, during and after vacuum filtration.
15
2. Assembling the Entire Vacuum Filtration System
2.1 Required Accessories:
Protection against contamination:
Lid for stainless steel
funnel, 100 ml 6981063
Lid seal, 100 ml 6981064
Lid for stainless steel
funnel, 500 ml 6981001
Lid seal, 500 ml 6981003
Vacuum sources:
Vacuum pump for
multiple-branch systems,
220 V, 50 Hz 16694-2-50-22
Vacuum pump for
multiple-branch systems,
110 V, 60 Hz 16694-1-60-22
Vacuum pump for
individual filter holder
systems, 220 V, 50 Hz 16694-2-50-06
Vacuum pump for
individual filter holder
systems, 110 V, 60 Hz 16694-1-60-06
Vacuum hose 16623
Protection of vacuum pumps:
Woulff’s bottle 16610
Vacusart®17804M
Handling the membrane filters:
Stainless steel blunt-tipped
forceps 16625
Microbiological testing:
Laboratory incubator,
220 V, 50/60 Hz 18113
Colony counter 17649
Preparation of nutrient pads:
Dosing syringe 16685-2
Minisart®, 0.2 μm 17597K
Sterile release of vacuum:
Minisart®SRP 25,
0.2 μm 17575-ACK
Removal of coarse particles:
Prefilter attachment 16807
Cellulose acetate prefilter,
8 μm 12301-050-ACN
– Use the vacuum hose to connect the fil-
trate flask to the water trap or barrier
(Woulff’s bottle or Vacusart®). Before
connecting the vacuum hose, attach the
safety connector to the side outlet of the
5- and|or 2-liter filtrate flask (does not
apply to the 16606 1-liter filtrate flask).
– Connect the vacuum pump to the water
trap. When installing the Vacusart®, make
sure that the filtrate overflow spills back
into the suction flask and is not left to
stand.
– Place the stopper onto the filtrate flask,
and connect the system components as
shown in the drawings and descriptions
under 1.1 “Multiple-Branch Systems”
and|or 1.2 “Individual Filter Holder
Systems.”

Below is a description of the methodology
to determine colony counts with reusable
systems made of stainless steel, glass or
polycarbonate. A detailed description of
microbiological test methods used for
ready-to-connect units, such as Biosart®100
Monitors or 250 Funnels, can be found in
the Instructions for use accompanying the
corresponding product.
3.1 All system components that come into
contact with the sample and filter membrane
must be sterile. Sterility can be ensured in
different ways depending on the materials
utilized.
a) Autoclaving (for stainless steel, glass and
polycarbonate): Assemble the unit so that
the filter membrane is clamped securely
between the base and the funnel. The filter
should not be clamped too tightly; other-
wise, steam will not penetrate the clamped
region of the membrane.
Adjust the three-way valve to the
12 o’clock position
(does not apply to individual glass filter
holders). It is not imperative to sterilize
the 16844, 16842 and|or 16843 stainless
steel manifolds when the adapted filter
holders (Biosart®100 or 250, stainless steel,
glass, polycarbonate) are changed under
sterile conditions.
Cover the inlets and outlets with aluminum
foil, and autoclave according to the specifi-
cations of the system components. After
sterilization, assemble the filtration funnel,
ascertaining all connections are tight,
and attach the funnel to other system
components.
Adjust the three-way valve to the
9 o’clock position.
b) Flaming (only for stainless steel):
Flaming prevents long waiting periods
(autoclave cycles) between filtration runs
and is described in detail below.
3.2 Clean the laboratory bench, and disinfect
with alcohol or a commercial disinfectant.
3.3 Line up your sterile culture media, such
as nutrient pads in petri dishes or agar in
petri dishes. Moisten the nutrient pads with
3.0-3.5 ml of sterile distilled or demineral-
ized water. The dosing syringe (16685-2)
with a sterile Minisart®(17597-K) attached
simplifies the addition of water to nutrient
pads.
3.4 Place a Bunsen burner with a glass
beaker containing a little alcohol and a
pair of blunt-tipped forceps next to the
autoclaved filter holder. If you are working
with a stainless steel filter holder and will
sterilize it by flaming, proceed as follows:
a) Locate the sterile packaged membrane
filter within easy reach.
b) Turn on the vacuum source and remove
the stainless steel funnel.
c) Using a Bunsen burner flame the filter
support including the stainless steel frit by
opening the valve (turn to 6 o’clock) to draw
the flame through the filter support. Then
close the valve (turn to 9 o’clock).
d) Hold the stainless steel funnel in one
hand and flame it from below.
e) Reposition the stainless steel funnel
on the base, and lightly push down on the
quick-lock clamp to secure the funnel (there
is no need to force the clamp down to its
full extent). Using a spiral pattern, flame
the funnel on the inside from the bottom
to the top.
f) Flame the lid on the inside, and place it
back on the stainless steel funnel.
g) To accelerate cooling of the filter holder
and simplify insertion of the membrane
filter, rinse the filter holder with sterile water
(e.g. using a dosing syringe with a sterile
Minisart®attached). To remove the water via
vacuum, open the valve (turn to 6 o’clock),
then close it (turn to 9 o’clock).
h) Sterilize the blunt-tipped forceps briefly
in the flame and remove a sterile membrane
filter (if necessary with the yellow
protective paper) from the package. Using
one hand, remove the stainless steel funnel
with the lid from the base of the filter
holder, and use your other hand to center
the membrane filter (yellow protective paper
or grid should face upwards) on the filter
support.
i) If there is a yellow protective disc, make
sure to discard it before assembling the fun-
nel or the top part of the filter holder. Lock
the funnel in place using the clamp (lightly
push down on the quick-lock clamp to
secure the parts; there is no need to force
the clamp down to its full extent).
3.5 Pour the sample to be tested into the
funnel. For samples less than 5 ml, use
10 to 20 ml of sterile water or physiological
saline as diluent. Re-open the valve (turn
to 6 o’clock) to suction off the liquid, then
close the valve (turn to 9 o’clock).
3.6 Remove the funnel and using the
flamed, blunt-tipped forceps, remove
the membrane filter.
3.7 Place the membrane filter on a nutrient
pad or an agar plate and incubate. Make
certain no air bubbles are entrapped
between the membrane and nutrient pad.
3.8 The filter holders and components
should be rinsed them with 70% alcohol
and air-dry for storage.
3.9 The grid printed on the membrane
facilitates evaluation of the colony count.
The grid optically divides the filtration
surface into 130 squares, each measuring
3.1+3.1 mm. Therefore, one square equals
1/130 of the overall area (if you use the
6980103 stainless steel filter support with
a diameter of 47mm, available as an
accessory, the filtration area is reduced
to 9.6 cm2; hence, one grid square equals
1/100 of the 9.6 cm2).
Important Note: Prefiltration
Samples with a high particle load of dirt or
insoluble sediment must be prefiltered for
bacteriological testing. The stainless steel
prefilter attachment (16807) (which also can
be flamed) allows you to perform prefiltra-
tion concurrently with membrane filtration.
Attach it between the stainless steel funnel
and the base, and fill completely with sterile
water (to prevent air from becoming
entrapped and interfering with filtration),
and insert a 11301-050 bacteriological pre-
filter (8 μm pore size). This prefilter retains
any coarse particles in the sample, reducing
the particulate load on the membrane filter
on the stainless steel filter support. Colonies
are able to grow unimpeded by interfering
deposits. The prefilter attachment can also
be flamed.
16
3. Microbiological Tests

4.1 Assemble the filtration system as
described in Sections 2 and 3. A Minisart®
SRP25 should be used a a particle trap
during filtration to prevent exposure of the
membrane underside and filter support to
secondary contamination with particles.
If particle contamination is irrelevant for
your application, close off the Minisart®
outlet with a luer lock (male) plug.
4.2 If applicable, rinse any particles off the
filter holder, the membrane filter and the
blunt-tipped forceps.
4.3 Remove the corresponding funnel from
the base of the filter holder, and, using the
blunt-tipped forceps, place the membrane
filter on the filter support.
4.4 Place the funnel back onto the base of
the filter holder, and lock the funnel in place
with the clamp (lightly push down on the
quick-lock clamp to secure the parts; there is
no need to force the clamp down to its full
extent). Biosart®250 funnels can be locked
in place by turning clockwise.
4.5 Pour the sample to be tested into
the funnel.
4.6 Turn on the vacuum source and open
the three-way valve (turn to 6 o’clock).
4.7 At completion of filtration, close the
valve (turn to 9 o’clock) or turn off the
vacuum pump. Remove the funnel and
transfer the membrane filter for gravimetric,
optical, chemical or other analysis.
4.8 The grid printed on the membrane
facilitates visual evaluation of the residue.
The grid optically divides the filtration
surface into 130 squares, each measuring
3.1+3.1 mm. Therefore, one square equals
1/130 of the overall area (if you use the
6980103 stainless steel filter support with
a diameter of 47 mm, available as an acces-
sory, the filtration area is reduced to 9.6 cm2;
hence, one grid square equals 1/100 of the
9.6 cm2).
17
4. Analyses 5. Cleaning and Care of 6. Maintenance of Quick-Lock
Stainless Steel Filter Holders Clamps on Stainless Steel Funnels
To ensure a long service life, stainless steel
filter holders should be cleaned prior to
initial use and after each filtration run.
Proceed as follows:
5.1 Disassemble the filter holder.
5.2 Use soft brushes, warm water and a
gentle, commercially available laboratory
detergent (for metal, glass, plastic) to clean
all parts.
5.3 Rinse the parts with hot water and then
with distilled water. Drying can be accelerat-
ed by rinsing with a 70% alcohol solution.
5.4 Dry the parts in a drying oven. Please do
not use towels or cloth for drying because
they may deposit lint on the filter holders.
The quick-lock clamps tend to widen after
frequent use, and must be tightened to
prevent leakage. Grasp the clamp with
a pair of flat-nose pliers and apply slight
pressure to narrow the clamp’s opening.
Important Note:
Lightly push down on the quick-lock clamp
to secure the filter holder parts; there is no
need to force the clamp down to its full
extent.

If it becomes difficult to open and close any
of the valves, the valves should be removed
for cleaning, drying and lubrication (e.g.
generously lubricate with high-grade
heavy grease). To remove a valve, proceed
as follows:
7.1 First, remove the knurled nut and the
washer from the back of the valve.
7.2 Then detach the valve.
If valves from several filtration filter holders
have been disassembled, then each valve
must be replaced in the same tapered stem
guide from which it was removed. The valve
stem guide has been precisely machined to
the valve’s individual specifications to make
a leak-tight fit.
8.1 Spare parts for Stainless Steel Manifolds
8.2 Spare Parts for Individual Bases
8.3 Spare Parts for the 16835|
16836|16837 Adapters
Silicone stoppers for 16835 00279
Silicone stoppers for 16836 00280
Silicone stoppers for 16837 00281
Spare Parts for the 16306|16307
Glass Filter Holders
Please refer to the Directions for Use
(FL-6001-a) accompanying the product
for further information.
Spare Parts for the 16510 Polycarbonate
Filter Holder
Please refer to the Directions for Use
(FL-6026-n) accompanying the product
for further information.
18
7. Maintenance of Stainless 8. Spare Parts
Steel Three-Way Valves
6981001
stainless steel lid
6981003
silicone lid seal
6981002
funnel 500 ml with clamp
6980264 clamp
6980102 stainless steel frit 50 mm
6980103 stainless steel frit 47 mm
16840
(incl. 47 mm frit and silcone gasket)
stainless steel single base
16840
single base
16840
single base
6980124 silicone flat gasket
6980104 PTFE flat gasket
6980235 silicone O-ring (pack of 3)
6980271
silicone O-ring
16 + 2 mm
6980272
hose nipple
6980271
silicone O-ring
16 + 2 mm
6980270
stainless steel cap
16844 1-branch
16842 3-branch
16843 6-branch
Manifolds
without base
supports and
funnels:
6981063
stainless steel lid
6981064
silicone lid seal
6981065
funnel 100 ml
with clamp
6980264
clamp
6981004
funnel 40 ml
with clamp
6980267
stainless steel
3-way tap
6980268
knurled nut
6980225
Plug conical
(pack of 10)
17575-ACK
Minisart SRP
(pack of 50)
17012-E
Plug Luer Lock
(pack of 12)
6980274 8 20+silicone O-ring

9.1 Stainless Steel System Components
Manifolds 16844|16842|16843 Funnel|Lid|Seal 6981004 Base Support 16840
6981065|063|064, 6981002|001|003 Single Base 16841
Material AISI 304 stainless steel AISI 304 stainless steel AISI 304 stainless steel
(B.S. 304S31/German std. 1.4301) (B.S. 304S31/German std. 1.4301) (B.S. 304S31/German std. 1.4301)
Gasket Silicone, 14+2 mm (3 units) Silicone, 77.2+85.8 (6981064) Silicone, 41+50+1
Silicone, 122+131 (6981003)
Filter diameter – 47 mm (or 50 mm) 47 mm (or 50 mm)
Filtration area – 12.5 cm212.5 cm2
Dimensions (L/H/D) 16842: 435/103/120 – –
16843: 910/103/120
Maximum pressure limit Vacuum, max. 2 bar pressure limit Vacuum only Vacuum only
Disinfection – By flaming By flaming
Sterilization
Autoclaving 134°C max., 30 min. 134°C max., 30 min. 134° max. C, 30 min.
Dry heat 180°C max., 30 min. 180°C max., 30 min. 180°C max., 30 min.
Inlet TR 20+2 female thread – –
Outlet Hose connector, DN 10, 10 mm – 16840: TR 20+2 mm male thread with
DN 24 hex nut
16841: 10 mm outlet connectors
9.2 Connectors and Adapters
Filter Holder Adapters Biosart®100 Adapters 16414|16415|16416
16835|16836|16837
Material AISI 304 stainless steel Silicone (16414, 16415)
(B.S. 304S31/German std. 1.4301) Polypropylene (16415)
Stoppers Silicone –
Max. pressure limit Vacuum only Vacuum only
Sterilization
Autoclaving 134°C max., 30 min. 134°C max., 30 min.
Dry heat 180°C max., 30 min. –
Inlet 16835: 10 mm drill hole –
16836: 11 mm drill hole
16837: 14 mm drill hole
Outlet TR 20+2 mm male thread –
9.3 Biosart®100 Monitors and the Biosart®250 Funnel
Biosart®100 Monitors Biosart®250 Funnel
16401|02|03, 47 mm 16407
Materials:
Housing Polystyrene Polypropylene
Membrane filter Cellulose nitrate with grid –
Pad Cellulose –
Plug|adapter Polyethylene –
Filter diameter 47 mm 47 mm (or 50 mm)
Filtration area 15.5 cm212.5 cm2
Capacity 100 ml, graduated in 10-ml increments 250 ml, graduated in 50-ml increments
Max. pressure limit Vacuum only Vacuum only
Package quantity 50 units, sterile 50 units, sterile
Outlet 6.5+1.5 mm –
9.4 Glass Filter Holders and the Polycarbonate Filter Holder
Glass Filter Holder, 16306 Glass Filter Holder, 16307 Polycarbonate Filter Holder, 16511
Materials:
Adapter|base Borosilicate glass 3.3 Borosilicate glass 3.3 Polycarbonate
Clamp Anodized aluminum Anodized aluminum –
Filter support PTFE|borosilicate glass 3.3 PTFE|borosilicate glass 3.3 Polypropylene
Lid – Silicone Polycarbonate
Seal Silicone, 25+3 mm Silicone, 45+3 mm Silicone, 40+5, 80+3, 14+2
Filter diameter 25 mm, prefilter 20 mm 47 mm, prefilter 40 mm 47 mm, prefilter 37 mm
Filtration area 3 cm212.5 cm211.5 cm2
Capacity 30 ml 250 ml 250 ml
Max. pressure limit Vacuum only Vacuum only Vacuum, max. 2 bar pressure limit
Sterilization
Autoclaving 134°C max., 30 min. 134°C max., 30 min. 121°C max., 30 min.
Dry heat 180°C max., 30 min. 180°C max., 30 min. –
Outlet 12 mm outlet connector 15 mm outlet connector TR 20+2 mm male thread
19
9. Specifications

10.1 Three-Way Valve Positions
The Combisart®vacuum filtration system
features a high degree of flexibility and
versatility.
Sartorius Stedim Biotech is the first com-
pany to offer a system where all funnel
types can be adapted to all bases.
Due to the unique modular system of
Combisart®, preparation and filtration time
can be reduced by changing the funnel
material or number of units. Special
attention has been paid to the handling
of multiple-branch systems (3- and|or
6-place manifolds):
– Each filter unit can be autoclaved
separately from the manifold, saving
space inside autoclaves.
– By removing the filter unit from the
manifold, the supernatant above a
blocked membrane can be easily poured
off.
– The funnels can be conveniently posi-
tioned for left or right-handed use.
The Minisart®SRPs, (attached to the side
opening of the three-way valves), sterile
vents the air from the underside of the filter,
protecting it from any contamination by
microorganisms and for particles from the
surrounding environment, thus ensuring
reliable results.
20
10. Figures
Valve Position
OPEN
6 o’clock
Valve Position
VENTING
9 o’clock
Valve Position
CLOSE
3 o’clock
Valve Position
AUTOCLAVE
12 o’clock
For Filtration
The full vacuum draws the
sample through the membrane
filter. The vent filter is “off-line.”
After Filtration
The vacuum between the valve
and membrane filter is released
under sterile conditions, without
any particles being drawn into
the system. Secondary conta-
mination of the bottom of the
filter is ruled out entirely.
After the Filtration Run
The residual vacuum between
the pump and valve is released
via the sterilizing-grade filter.
For Autoclaving
For reliable sterilization, the
steam flows freely through
all openings.